Сухие питательные среды специального назначения для микробиологии — инструкция и характеристики

РУ: ФСЗ 2009/04467 от 01.06.2009 · класс риска 2а

Производитель: "ЛАБОРАТОРИОС КОНДА, С.А." (Испания)

Вид изделия: Питательный бульон базовый/простой питательная среда ИВД · Бульон дифференциальная/селективная питательная среда ИВД · Индоловый бульон/пептонная вода реагент для микробиологии ИВД

В госконтрактах 44-ФЗ: 238 контрактов, медианная цена за единицу 13 328 ₽.

Автоматически отфильтрованный фрагмент инструкции по применению (страницы, где похоже, что есть таблица технических характеристик) — не полный документ. Карточка РУ на портале Росздравнадзора →

Текст инструкции: технические характеристики

--- стр. 12 ---
2.2. А г а р  B IG G Y  ( B IG G Y  A g a r)
Для вьщеления и идентификации Candida
Ф О РМ У Л А  В ГРА М М А Х  Н А  Л И Т Р
Декстроза 10.00 Глицин 10.00
Цитрат аммонийного висмута 5.00 С ул ьф и т н атр и я 3.00
Д р о ж ж ево й  э к с т р а к т 1.00 Бактериологический агар 16.00
Конечная величина p H  6.8 ± 0.2 при 25°С 
Приготовление
Развести 45 г среды в 1  литре дистиллированной воды. Тщательно перемешать и нагреть при 
частом помешивании до полного растворения. Кипятить не более одной минуты. Охладить 
до 45-50°С. Осторожно размешать среду и разлить по 20 мл в стерильные чашки Петри. 
Н Е  А В Т О К Л А В И Р О В А Т Ь !
Использование
Агар B IG G Y  -  это агар, содержащий висмут, глицин, глюкозу и дрожжевой экстракт. 
Используется для вьщеления и дифференциации С. albicans и С. tropicalis, а также для 
дифференциации видов по методу Никерсона.
Дрожжевой экстракт служит источником необходимых для роста питательных веществ: 
азота, витаминов и аминокислот; глицин стимулирует рост; декстроза -  ферментируемый 
углевод, являющ ийся источником углерода и энергии. Candida spp.  восстанавливают 
сульфит натрия до серы с образованием колоний цветом от коричневого до черного; цитрат 
аммонийного висмута и сульфит натрия являю тся также ингибиторами роста других 
бактерий.
Инокулировать и инкубировать 18-72 часа при 30 ± 2 °С . Чаш ки со средой следует разливать 
непосредственно перед использованием. Посев на скошенные поверхности обычно дает 
неудовлетворительные результаты.
Кандидоз - наиболее часто встречающаяся инфекция, вызываемая оппортунистическими 
грибами. Дифференциация основана на морфологии колоний.
Х А Р А К Т Е Р И С Т И К И  К СЛ О Н Н И :
С. albicans:  Коричневые или 
черные, с гладкой 
поверхностью, круглые или 
полусферические колонии с 
тонкой каймой мицелия.
С. tropicalis:  Темно-коричневые 
дискретные колонии, с черной 
выпуклостью в центре и тонкой 
каймой мицелия. Диффузное 
почернение среды происходит только 
у этого вида приблизительно через 72 
ч инкубации.
С. parakrusei:  Плоские, с частыми 
складками, колонии среднего размера, 
блестящие, темно-красновато­
коричневого цвета, переходящего в 
светло-красновато-коричневый и 
широкую желтоватую кайму мицелия.
С. krusei: Большие плоские, 
складчатые колонии 
серебристо-черно-коричневого 
цвета, с переходом в 
коричневую периферию и 
желтое гало.
С. pseudotropicalis:  Темные 
красновато-коричневые блестящие, 
большие, плоские колонии с тонкой 
каймой мицелия.
С. stellatoidea:  Темно-коричневые, 
плоские колонии среднего размера 
при почти полном отсутствии 
развития мицелия.
Литература
Nickerson, W .J. 1953. Reduction of inorganic substances by yeasts. I. Extracellular reduction of sulfite by species of 
Candida. J. Infect. Dis. 93:43.
Warren, N.G., and K.C. Hazen. 1955. Candida, Cryptococcus  and other yeasts of medical importance, p. 11Ъ-1Ъ1. IN  
P.R. Murray, E.J. Baron, M.A. Pfaller, F.C. Tenover and R.H. Yolken (ed.) Manual of clinical microbiology, 6'* ’ ed. 
American Society for Microbiology, Washington D.C.
М И К Р О Б И О Л О Г И Ч Е С К И Й  Т Е С Т
Следующие результаты были получены при использовании среды на тестовых культурах 
после инкубации при температуре 30 ± 2 °С  и наблюдались через 18-72 часа.
1 2


--- стр. 13 ---
М икроорганизмы Poem Ц в е т
Candida albicans А Т С С  10231 Хорош ий О т  коричневого до черного
Candida pseudotropicalis Хороший О т  коричневого до красного
Escherichia co li A T C C  25922 Замедленный —
Staphylococcus aureus A T C C  25923 Замедленный -
2.3. Агар CLED (CLED Agar)
Для культивирования Грам-положительных и Грам-отрицательных бактерий из мочевых 
путей. Ингабирует развитие Proteus.
Ф О Р М У Л А  В  Г Р А М М А Х  Н А  Л И Т Р
Л а к то за 10.00 Казеиновый пептон 4.00
Ж елатинны й пептон 4.00 М ясной э к с т р а к т 3.00
Ь-цистеин 0.128 Бром тгш оловы й синий 0.02
Бактериологический агар 15.00
Конечная величина p H  7.3 ± 0.2 при 25°С
Приготовление
Развести 36 г среды в 1  литре дистиллированной воды. Вьщ ержать 10-15 минут, затем 
тщательно перемещать. Медленно нагреть при частом помешивании. Кипятить в течение 
одной минуты. Стерилизовать 15 минут при 121 °С . Разлить в чаш ки Петри. Когда среда 
затвердеет, перевернуть чашки для удаления избытка влаги.
Использование
Агар C L E D  - неселективная дифференциальная среда для роста и подсчета 
микроорганизмов мочевых путей. Отсутствие хлорида натрия ингибирует обильное 
разрастание колоний Proteus и способствует росту подавляющего большинства бактерий, 
вызывающих инфекции мочевых путей, поэтому среда используется для их дифференциации 
и идентификации. Присутствие бактериальных примесей (лактобациллы и другие 
микроорганизмы) указывает на неосторожность при работе с образцами мочи.
Возбудители инфекций мочевыводящих путей, обычно растут обильно и принадлежат 
только к одному виду. Наиболее часто вьщеляется Е. соИ. Посев пробы можно делать 
методом разведения или посева штрихом на поверхность агара с помощью калиброванной 
петли. Сосчитать колонии через 18 часов инкубации при температуре 35 ± 2 °С . Указать 
количество колоний в 1  мл мочи.
Х А Р А К Т Е Р И С Т И К И  К О Л О Н И И :
Staph, aureus:  темно­
желтые колонии 
диаметром 0,75 мм.
Proteus:  полупрозрачные, 
синие, меньше, чем Е. 
соИ
Esch erich ia соИ: большие, выпуклые, желтые, матовые, 
более интенсивного цвета в центре. Желтый агар (штаммы, 
не ферментируюшие лактозу: синие колонии)_____________
Литература
Bebis, Т. D. J. Med. Lab. Technol., 26-38-41. 1968. Mackey, J. R. and Sandys, G. H. 1965.
B.M.H. 1  1173. Mackey, J. R. and Sandys, G. H. 1966. B.M.H. 1  1173. Guttman, D. And Nailer G.R.E., 1967 B.M .J. 2 
343-345.
М И К Р О Б И О Л О Г И Ч Е С К И Й  Т Е С Т
Следующие результаты были получены при использовании среды на тестовых культурах
М икроорганизмы Poem Ц в е т  колонии
Escherichia co li A T C C  25922 Хорош ий Ж е л т ы й  (ж е л т ы й  агар)
Proteus vulgaris A T C C  13315 Замедленный (обильный р о с т  замедлен) Синий -  сине-зеленый
Staphylococcus aureus A TC C 
25923
Хороший Ж е л т ы й
13


--- стр. 14 ---
2.4. Агар CLED с индикатором Андраде (CLED Agar w/ Andrade’s  
Indicator).
Модификация C L E D  агара для увеличения дифференциации колоний
Ф О Р М У Л А  В  Г Р А М М А Х  Н А  Л И Т Р
Л а к то за 10.00 Казеиновый пептон 4.00
Ж елатин ны й пептон 4.00 М ясной э к с т р а к т 3.00
L -цистеин 0.128 И нд икатор Андраде 010
Бромтимоловый синий 0.02 Бактериологический агар 15.00
Конечная величина p H  7.5 ± 0.2 при 25°С 
Приготовление
Развести 36,2 г среды в 1  литре дистиллированной воды. Тщательно перемещать и нагреть 
при частом помешивании до полного растворения. Стерилизовать 15 минут при 121 °С . 
Тщательно перемешать и разлить в чашки Петри.
Использование
А гар C L E D  с индикатором Андраде имеет такой же состав, как C L E D  агар, но с 
добавлением индикатора Андраде. Он способствует обнаружению колоний и идентификации 
микроорганизма при добавлении кислого фуксина.
Среда основана принципе ферментации лактозы, причем pH среды снижается при 
образовании кислоты.
Казеиновый пептон, мясной экстракт и желатиновый пептон являю тся источниками 
необходимых для роста питательных веществ: азота, витаминов, минеральных солей и 
аминокислот. Лактоза -  ферментируемый углевод, обеспечивающий углерод и энергию. L- 
цистеин - добавка для роста цистеин-зависимых колиформ. Бромтимоловый синий и 
индикатор Андраде -  индикаторы pH.
Инокулировать и инкубировать при температуре 35 ± 2 °С  не более 24 часов, так как в случае 
доминирования организмов, ферментирующих лактозу, вся среда может стать розовой, 
маскируя присутствие организмов, не ферментирующих лактозу.
Х А Р А К Т Е Р И С Т И К И  К О Л О Н И Й :
Escherichia соИ:  Ярко-розовые 
полупросвечивающие колонии, 
окруженные розовым гало
Р. m irabilis: Сине- 
зеленые просвечивающие
колонии
Staph, aureus:  ровные, цельные, матовые; 
яркие золотисто-желтые колонии. 
Ферментируют лактозу_________________
Литература
Bevis, T.D. (1968) J. Med. Lab. Technol. 25.38-41. Fumiss A.L., Lee J.V . and Donovan T.J. (1978) P.H.L.S.  
Monograph series, London, H.M.S.O., 11.
М И К Р О Б И О Л О Г И Ч Е С К И Й  Т Е С Т
Следующие результаты были получены при использовании среды на тестовых культурах 
после инкубации при 35 ± 2 °С  и наблюдались не позднее 24 часов.
М икроорганизм ы Р о с т Ц в е т  колонии
Р. m irabilis А Т С С  10975 Хороший Сине-зеленый, просвечивающий
Escherichia co li А Т С С  25922 Хороший Ярко-розовый, полупросвечивающий
Staph, aureus А Т С С  25923 Хороший Зо л о ти сто - ж е л ты й
14